Calbryte™ 590 AM

Kit de ensayo de Flujo de calcio intracelular Calbryte™ 590 AM. Este ensayo es un método ampliamente utilizado para monitorear las vías de transducción de señales y la detección de alto rendimiento de receptores acoplados a proteína G (GPCR) y objetivos de canales de calcio.

Descripción

El ensayo de flujo de calcio intracelular es un método ampliamente utilizado para monitorear las vías de transducción de señales y la detección de alto rendimiento de receptores acoplados a proteína G (GPCR) y objetivos de canales de calcio. Seguido por Rhod-2 que se introdujo en 1989, Rhod-4 y Cal-590 se desarrollaron más tarde con una relación señal/fondo mejorada, y se convirtieron en los indicadores de Ca2+ fluorescentes rojos ampliamente utilizados para microscopía confocal, citometría de flujo y aplicaciones de detección de alto rendimiento En células CHO y HEK, Rhod-4 y Cal-590 tienen una respuesta de calcio celular que es 10 veces más sensible que Rhod-2 AM. Sin embargo, Cal-590 y Rhod-4 son aún menos sensibles al calcio en las células que los indicadores de calcio fluorescentes verdes correspondientes (p. ej., Fluo-8 y Cal-520).

Calbryte™ 590 es una nueva generación de indicadores fluorescentes rojos para la medición del calcio intracelular. u relación señal/fondo muy mejorada y sus propiedades de retención intracelular hacen de Calbryte™ 590 AM el indicador fluorescente rojo más robusto para evaluar GPCR y canales de calcio, así como para detectar sus agonistas y antagonistas en células vivas. Al igual que otras marcas de colorante AM en células, el Calbryte™ 590 AM éster no es fluorescente y una vez que ingresa a la célula, es hidrolizado por la esterasa intracelular y se activa. El indicador activado es una molécula polar que ya no es capaz de difundirse libremente a través de la membrana celular, esencialmente atrapada dentro de las células. 

CatalogoProductoPresentación
AAT-20700Calbryte™ 590 AM2 x 50 ug
AAT-20701Calbryte™ 590 AM10 x 50 ug
AAT-20702Calbryte™ 590 AM1 mg

Importante: Solo para uso en investigación (RUO). Almacenamiento: Congelar a  (< -15 °C), Minimizar la exposición a la luz.

Plataforma

Lector de Microplacas de Flourescencia

Excitación540 nm
Emisión590 nm
Corte570 nm
Placa RecomendadaParedes negras / fondo claro
Especificaciones InstrumentoModo de lectura inferior / Manejo de líquidos programable

Microscopio de Flourescencia

ExcitaciónTRITC/Cy3
EmisiónTRITC/Cy3
Placa recomendadaParedes negras / fondo claro

Espectro

Abrir en Advanced Spectrum Viewer

Propiedades espectrales

Excitación (nm)581
Emisión (nm)593
PREPARACION DE SOLUCIONES DE STOCK

A menos que se indique lo contrario, todas las soluciones madre no utilizadas deben dividirse en alícuotas de un solo uso y almacenarse a -20 °C después de la preparación. Evite los ciclos repetidos de congelación y descongelación.

Solución madre Calbryte™ 590 AM
Prepare una solución madre de 2 a 5 mM de Calbryte™ 590 AM en DMSO anhidro de alta calidad.


PREPARACION DE SOLUCIONES DE TRABAJO

Solución de trabajo Calbryte™ 590 AM
El día del experimento, disuelva Calbryte™ 590 AM en DMSO o descongele una alícuota de la solución madre indicadora a temperatura ambiente. Prepare una solución de trabajo de tinte de 2 a 20 µM en un buffer de su elección (p. ej., tampón Hanks y Hepes) con Pluronic® F-127 al 0,04 %. Para la mayoría de las líneas celulares, se recomienda Calbryte™ 590 AM a una concentración final de 4 a 5 μM. La concentración exacta de indicadores necesarios para la carga de células debe determinarse empíricamente.
Nota: El detergente no iónico Pluronic® F-127 a veces se usa para aumentar la solubilidad acuosa de Calbryte™ 590 AM. Se puede comprar una variedad de soluciones Pluronic® F-127 de AAT Bioquest.
Nota: Si sus células contienen transportadores de aniones orgánicos, se puede agregar probenecid (1-2 mM) a la solución de trabajo del colorante (la concentración final en el pocillo será de 0.5-1 mM) para reducir la fuga de los indicadores desesterificados. Se puede comprar una variedad de productos de probenecid ReadiUse™, que incluyen sal de sodio soluble en agua y solución estabilizada, en AAT Bioquest.

Calculadora

Preparación de la solución de stock común
Volumen de DMSO necesario para reconstituir la masa específica de Calbryte™ 590 AM a la concentración dada. Tenga en cuenta que el volumen es solo para preparar la solución madre. Consulte el protocolo experimental de muestra para conocer los buffers experimentales/fisiológicos apropiados.

0.1 mg0.5 mg1 mg5 mg10 mg
1 mM82.05 µL410.25 µL820.499 µL4.102 mL8.205 mL
5 mM16.41 µL82.05 µL164.1 µL820.499 µL1.641 mL
10 mM8.205 µL41.025 µL82.05 µL410.25 µL820.499 µL

Imagen

Figura 1. Se midió una dosis-respuesta de ATP en células CHO-K1 con Calbryte™ 590 AM. Se sembraron células CHO-K1 durante la noche a 50.000 células/100 µl/pozo en una placa costar de 96 pocillos de pared negra/fondo transparente. Se añadieron 100 µl de 10 µg/ml de Calbryte™ 590 AM en buffer HH con probenecid y se incubaron durante 60 min a 37 °C. A continuación, la solución de tinte se eliminó y se reemplazó con 200 µl de buffer HH/pozo. FlexStation 3 añadió ATP (50 µl/pocillo) para alcanzar las concentraciones finales indicadas.

Productos Relacionados

Calbryte™ 520, potassium salt
Calbryte™ 590, potassium salt
Calbryte™ 630, potassium salt
Calbryte™-520L, potassium salt
Calbryte™-520XL azide
Calbryte™-520XL, potassium salt
Calbryte™-520XL-Dextran
Chemical Phosphorylation Reagent I (CPR I)
Cell Meter™ Mitochondrial Hydroxyl Radical Detection Kit *Red Fluorescence*
Cal Green™ 1, hexapotassium salt

Bibliografía

The influence of spontaneous and visual activity on the development of direction selectivity maps in mouse retina
Authors: Tiriac, Alexandre and Bistrong, Karina and Pitcher, Miah N and Tworig, Joshua M and Feller, Marla B
Journal: Cell reports (2022): 110225

Microglia modulate blood flow, neurovascular coupling, and hypoperfusion via purinergic actions
Authors: Cs{\’a}sz{\’a}r, Eszter and L{\’e}n{\’a}rt, Nikolett and Cser{\’e}p, Csaba and K{\”o}rnyei, Zsuzsanna and Fekete, Rebeka and P{\’o}sfai, Bal{\’a}zs and Bal{\’a}zsfi, Di{\’a}na and Hangya, Bal{\’a}zs and Schwarcz, Anett D and Szabadits, Eszter and others,
Journal: Journal of Experimental Medicine (2022)

Neurodegeneration in human brain organoids infected with herpes simplex virus type 1
Authors: Rybak-Wolf, Agnieszka and Wyler, Emanuel and Legnini, Ivano and Loewa, Anna and Gla{\v{z}}ar, Petar and Kim, Seung Joon and Pentimalli, Tancredi Massimo and Martinez, Anna Oliveras and Beyersdorf, Benjamin and Woehler, Andrew and others,
Journal: bioRxiv (2021)

Investigating the Molecular Mechanisms of TMEM16F–a Ca2+ Activated Phospholipid Scramblase and Ion Channel
Authors: Le, Trieu Phuong Hai
Journal: (2021)

KRAP tethers IP3 receptors to actin and licenses them to evoke cytosolic Ca2+ signals
Authors: Thillaiappan, Nagendra Babu and Smith, Holly A and Atakpa-Adaji, Peace and Taylor, Colin W
Journal: Nature communications (2021): 1–13

Evidence that polyphenols do not inhibit the phospholipid scramblase TMEM16F
Authors: Le, Trieu and Le, Son C and Zhang, Yang and Liang, Pengfei and Yang, Huanghe
Journal: Journal of Biological Chemistry (2020): 12537–12544

A fluorescent sensor for spatiotemporally resolved endocannabinoid dynamics in vitro and in vivo
Authors: Dong, Ao and He, Kaikai and Dudok, Barna and Farrell, Jordan S and Guan, Wuqiang and Liput, Daniel J and Puhl, Henry L and Cai, Ruyi and Duan, Jiali and Albarran, Eddy and others,
Journal: BioRxiv (2020)

Ca2+ Release by IP3 Receptors Is Required to Orient the Mitotic Spindle
Authors: Lagos-Cabr{\’e}, Raul and Ivanova, Adelina and Taylor, Colin W
Journal: Cell reports (2020): 108483

TMEM16F phospholipid scramblase mediates trophoblast fusion and placental development
Authors: Zhang, Yang and Le, Trieu and Grabau, Ryan and Mohseni, Zahra and Kim, Hoejeong and Natale, David R and Feng, Liping and Pan, Hua and Yang, Huanghe
Journal: Science advances (2020): eaba0310

Biased modulators of NMDA receptors control channel opening and ion selectivity
Authors: Perszyk, Riley E and Swanger, Sharon A and Shelley, Chris and Khatri, Alpa and Fernandez-Cuervo, Gabriela and Epplin, Matthew P and Zhang, Jing and Le, Phuong and B{\”u}low, Pernille and Garnier-Amblard, Ethel and others,
Journal: Nature chemical biology (2020): 188–196

Referencias

A flow cytometric comparison of Indo-1 to fluo-3 and Fura Red excited with low power lasers for detecting Ca(2+) flux
Authors: Bailey S, Macardle PJ.
Journal: J Immunol Methods (2006): 220

Functional fluo-3/AM assay on P-glycoprotein transport activity in L1210/VCR cells by confocal microscopy
Authors: Orlicky J, Sulova Z, Dovinova I, Fiala R, Zahradnikova A, Jr., Breier A.
Journal: Gen Physiol Biophys (2004): 357

Comparison of human recombinant adenosine A2B receptor function assessed by Fluo-3-AM fluorometry and microphysiometry
Authors: Patel H, Porter RH, Palmer AM, Croucher MJ.
Journal: Br J Pharmacol (2003): 671

Measurement of the dissociation constant of Fluo-3 for Ca2+ in isolated rabbit cardiomyocytes using Ca2+ wave characteristics
Authors: Loughrey CM, MacEachern KE, Cooper J, Smith GL.
Journal: Cell Calcium (2003): 1

A sensitive method for the detection of foot and mouth disease virus by in situ hybridisation using biotin-labelled oligodeoxynucleotides and tyramide signal amplification
Authors: Zhang Z, Kitching P.
Journal: J Virol Methods (2000): 187

Kinetics of onset of mouse sperm acrosome reaction induced by solubilized zona pellucida: fluorimetric determination of loss of pH gradient between acrosomal lumen and medium monitored by dapoxyl (2-aminoethyl) sulfonamide and of intracellular Ca(2+) chang
Authors: Rockwell PL, Storey BT.
Journal: Mol Reprod Dev (2000): 335

MRP2, a human conjugate export pump, is present and transports fluo 3 into apical vacuoles of Hep G2 cells
Authors: Cantz T, Nies AT, Brom M, Hofmann AF, Keppler D.
Journal: Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol (2000): G522

Use of co-loaded Fluo-3 and Fura Red fluorescent indicators for studying the cytosolic Ca(2+)concentrations distribution in living plant tissue
Authors: Walczysko P, Wagner E, Albrechtova JT.
Journal: Cell Calcium (2000): 23

[Ca2+]i following extrasystoles in guinea-pig trabeculae microinjected with fluo-3 – a comparison with frog skeletal muscle fibres
Authors: Wohlfart B., undefined
Journal: Acta Physiol Scand (2000): 1

Determination of the intracellular dissociation constant, K(D), of the fluo-3. Ca(2+) complex in mouse sperm for use in estimating intracellular Ca(2+) concentrations
Authors: Rockwell PL, Storey BT.
Journal: Mol Reprod Dev (1999): 418

Aplication Notes (en Ingles)

A Comparison of Fluorescent Red Calcium Indicators for Detecting Intracellular Calcium Mobilization in CHO Cells
Calbryte™ 520, Calbryte™ 590 and Calbryte™ 630 Calcium Detection Reagents
Introducing Calbryte™ Series
A Comparison of Fluorescent Red Calcium Indicators for Detecting Intracellular Calcium Mobilization in CHO Cells
Calbryte™ 520, Calbryte™ 590 and Calbryte™ 630 Calcium Detection Reagents